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Ciao Gus, ti ringrazio ancora per la tua attenzione… il sogno sarebbe usare geometry con booklet, a parer mio molto più intuitivo di memoir (tra l’altro se Wilson afferma nel pdf del pacchetto booklet che si può tranquillamente usare geometry, credo che una revisionata del pacchetto sia necessaria.
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Fa piacere sapere che non sono ‘unico in difficoltà nella cosaprint booklet, use no packages
Everyone,
I am setting up a “book” document for FarsiTex, which is LaTex2e UNaware, and as a result
packages such as “fancyhdr” and/or “geometry cannot be used along with. I have to stick to
LaTeX 2.09 command set at all times! Having imposed the limitations of LaTeX 2.09, how do I
set [pagesize, twoside, margins] and so on and so forth in the preamble so that I can print
on:* Both sides of letter size paper
* 2 pages per side
* Fold from the center (and stitch together)Thanks.
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Grazie per il consiglio, ho provato a fare come mi hai detto ma mi viene restituito un margine sinistro minuscolo, uno destro molto più grande e una distanza fra le due pagine presenti nell’A4 poco più grande del margine destro.Spero di aver capito cosa intendevi per minimale, se il file è troppo lungo lo cancello.
\documentclass[10pt,a4paper,DIV11]{scrartcl}
\usepackage[latin1]{inputenc}
\usepackage{xymtex}
\usepackage{chemist}
\usepackage[italian]{babel}
\usepackage{epsfig}
\usepackage{amsmath}
\setcounter{tocdepth}{2}
\setcounter{secnumdepth}{2}
\usepackage{fancyhdr}
\usepackage[margin=2cm]{geometry}
\usepackage[print]{booklet}
\title{Tecniche immunologiche}
\date{}
\author{di Narducci Roberto}
\source{\magstep0}{\paperwidth}{\paperheight}
\target{\magstepminus2}{11in}{8.5in}\begin{document}
\setpdftargetpages
\maketitle
\thispagestyle{empty}
\lhead{}
\chead{\bfseries Tecniche immunologiche }
\rhead{}
\cfoot{\thepage}
\lfoot{}
\rfoot{}
\renewcommand{\headrulewidth}{0.4pt}
\renewcommand{\footrulewidth}{0.4pt}
\newpage
\tableofcontents
\newpage
\pagestyle{fancy}
\section{Isolamento di cellule mononucleate dal sangue periferico
mediante centrifugazione in gradiente di densità}\subsection{Obbiettivi}
Lo scopo dell’esperienza consiste nell’isolare da una soluzione
iniziale di sangue periferico le cellule mononucleate e
successivamente nel determinare la quantità di monociti e linfociti
vivi sul totale dei visualizzati.\subsection{Materiale necessario}
\begin{tabular}{|p{5.5cm}|}
\hline
5,5ml di sangue \\
\hline
2,0 ml di miscela Ficoll-Hypaque \\
\hline
3 ml di tampone PBS \\
\hline
Colorante Trypan Blue\\
\hline
1,0 ml di soluzione di emolisi\\
\hline
Una micropipetta da 20$\mu$l\\
\hline
Pipette Pasteur\\
\hline
Tre eppendorf\\
\hline
Una camera di Burker\\
\hline
\end{tabular}
\medskipPer le operazioni di centrifuga sono state usate due apparecchi con
capacità superiore a 500 RCFxg.\subsection{Procedimento}
Inizialmente i 5,5 ml di sangue sono fatti stratificare sopra i
2 ml della miscela Ficoll-Hypaque, tenendo la provetta per obliquo così
da far depositare il sangue lentamente sull’altra soluzione evitando
il mescolamento. \\ Il tutto poi è sottoposto ad una
centrifugazione in gradiente a temperatura ambiente per quindici minuti amoltiplichiamo per il fattore di diluizione (10) e infine per 10$^3$
così da avere una concentrazione con unità di misura di cellule/ml.
\newpage
\subsection{Procedimento}
Si comincia con l’aggiunta di 10 $\mu$l di EDTA (chelante degli ioni
bivalenti) alla nostra soluzione di sangue. Successivamente vengono
\newpage
sangue iniziale. La soluzione prelevata è posta in un’eppendorf
assieme a 500 $\mu$l di PBS-FBS e subisce un’ultima centrifugazione a
13.000 rpm per cinque minuti.\subsection{Eventuali problemi riscontrati}
Data la poca esperienza, il prelievo del sottile anello di monociti si
è rivelato problematico: assieme a questi sono state prelevate altre
componenti del sangue centrifugato. Non trovando neanche il tappo per
il tubo del Ficoll, le ripetute sollecitazioni che questo ha dovuto
subire prima per essere chiuso con un tappo che non era il suo e
successivamente per effettuare la sostituzione con quello legittimo
ha comportato un piccolo mescolamento delle due fasi che però non ha
compromesso irrimediabilmente le operazioni successive.\section{Estrazione di DNA genomico da linfociti}
\subsection{Obbiettivi generali}
Scopo dell’esperienza di laboratorio è isolare del DNA
genomico da dei linfociti, amplificarne l’esone 7 del gene erg3
tramite la tecnica della reazione a catena della polimerasi (PCR) e
caricare infine l’esone isolato nel gel elettroforetico opportunamente allestito.\subsection{Materiale necessario per isolamento DNA genomico}
\newpage
di PBS e traferiamo tutto in una provetta per microcentrifuga,
centrifugando secondo gli stessi parametri dell’operazione precendente.
Scartiamo il supernatante e risospendiamo nel buffer di lisi
arricchito dell’opportuna quantità di proteinasi K (vedi la sezione
“dati ed elaborazione dati”).
Il tutto è vortexato ed incubato ad una temperatura di 55$^o$ in leggera agitazione
per un’ora e mezzo.
Passato il tempo necessario è eseguita una breve centrifuga per
\newpage
trasferisce in una provetta pulita e si aggiunge un volume di
fenolo/cloroformio – isoalamilalcool 24:1; il tutto viene poi vortexato
e centrifugato per un minuto a velocità massima.Le ultime operazioni riportate di seguito possono essere eseguite
direttamente sul banco.Recuperata la fase superiore la risospendiamo in una provetta a cui
sono aggiunti 300$\mu$l (due volumi) di etanolo assoluto (-20$^o$C), 15$\mu$l (un
decimo di volume) di Na – acetato 3M pH 5.2.\\ Arrivati a questo punto
il DNA precipita velocemente e possiamo passare ad una centrifuga di
10 minuti a velocità massima a temperatura ambiente cui segue un
lavaggio con etaolo al 70\% e un’altra centrifuga per tre minuti.
L’ultimo passaggio prevede l’essiccazione del pellet e la
risospensione di questo in 10mM Tris pH 8.5.
\end{document}Se vuoi accorcaire il testo è il numero delle pagine fa pure…
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Mi scuso per quanto successo, sono alle primissime armi come si vede…
Ho provato a fare quanto mi hai detto, il codice inserito è\usepackage[hcentering]{geometry}
Ho provato anche hmargin=1.5cm, oppure marginratio=1:1…
Niente, prima di compilare con l’opzione print tutto ok, ma appena lancio booklet comandi come marginratio non vengono considerati, altri come inner=x e outer=y sono presi in considerazione, ma sono “forzati” a seguire come dei margini preimpostati (secondo me in rapporto 2:3)…
E’ come se booklet si rifiutasse di lasciar perdere il rapporto 2:3 dei margini anche se glielo impongo con marginratio….
Il file log non mi segnala errori pergiunta.
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Se può essere d’aiuto comunque il mio scopo sarebbe creare un booklet con margini inner e outer identici (con le pagine centrate nelle lore rispettive metà-A4.
Il sogno poi sarebbe avere anche il margine sinistro più largo di 6mm.
Ho cominciato a leggere anche la documentazione per memoir, ma non è che ci capisca molto per ora…
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Ti ringrazio per la risposta.
Sono stato poco preciso nel postare il problema.
Il guaio è che il riquadro non sembra tener minimamente conto della formula che deve contenere, date le dimensioni iniziali\frameboxit {3cm}
Mi viene restituito un riquadro di 3 cm di larghezza e di un’altezza fissa… la mia formula poi può tranquillamente andare fuori per quanto riguarda l’altezza.
L’ideale sarebbe conoscere un comando parallelo in cui però settare anche l’altezza (se poi esistesse un modo per creare una cornice che automaticamente si adatta alle dimesioni della formula che contiene sarebbe il massimo).
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Volevo ringraziare per la risposta.Confermo quanto detto sopra: ho trovato che il pacchetto è disponibile a questo indirizzo
http://imt.chem.kit.ac.jp/fujita/fujitas3/xymtex/indexe.html#xym401
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